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GEO生信数据挖掘(六)实践案例——四分类结核病基因数据预处理分析_四个分组的geo数据处理

四个分组的geo数据处理

前面五节,我们使用阿尔兹海默症数据做了一个数据预处理案例,包括如下内容:

GEO生信数据挖掘(一)数据集下载和初步观察

GEO生信数据挖掘(二)下载基因芯片平台文件及注释

GEO生信数据挖掘(三)芯片探针ID与基因名映射处理

GEO生信数据挖掘(四)数据清洗(离群值处理、低表达基因、归一化、log2处理)

GEO生信数据挖掘(五)提取临床信息构建分组,分组数据可视化(绘制层次聚类图,绘制PCA图)

本节目录

结核病基因表达数据(GSE107994)观察

临床形状数据预处理

基因表达数据预处理

绘图观察数据


结核病基因表达数据(GSE107994)观察

由于,在数据分析过程,你拿的数据样式可能会有不同,本节我们以结核病基因表达数据(GSE107994)为例,做一个实践案例。该数据集的临床形状数据和基因表达数据是单独分开的,读取,和处理都需自己改动代码。

先来看看基因表达数据,这个探针注释工作已经完成了,不需要处理。

再看看临床形状数据,需要手工删除前面的注释,把后半部分规整的数据保留下来。

临床形状数据预处理

# 手工删除前面的注释,读文件,转置
pdata <- t(read.delim("GSE107994_series_matrix_clean.txt", header = TRUE, sep = "\t"))

  1. # 手工删除前面的注释,读文件,转置
  2. pdata <- t(read.delim("GSE107994_series_matrix_clean.txt", header = TRUE, sep = "\t"))
  3. pdata <-pdata[-1,]
  4. pdata_info = pdata[,c(1,7)]
  5. colnames(pdata_info) = c('geo_accession','type')
  6. #观察样本类型的取值都有哪些(结核,潜隐进展,对照和潜隐)
  7. unique(pdata_info[,2])
  8. #"Leicester_Active_TB" "Longitudnal_Leicester_LTBI_Progressor" "Leicester_Control" #"Leicester_LTBI"
  9. group_data = as.data.frame(pdata_info)

处理前

处理后

增加不同的类型标签,根据需要,选取实验组和对照组

  1. # 使用grepl函数判断字符串是否包含'Control',并进行相应的修改
  2. group_data$group_easy <- ifelse(grepl("Control", group_data$type ), "Control", "TB")
  3. # 使用grepl函数判断字符串是否包含特定内容,然后进行相应的修改
  4. group_data$group_easy <- ifelse(grepl("Control", group_data$type), "Control",
  5. ifelse(grepl("LTBI", group_data$type), "LTBI","TB"))
  6. # 使用grepl函数判断字符串是否包含特定内容,然后进行相应的修改
  7. group_data$group_more <- ifelse(grepl("Control", group_data$type), "Control",
  8. ifelse(grepl("LTBI_Progressor", group_data$type), "LTBI_Progressor",
  9. ifelse(grepl("LTBI", group_data$type), "LTBI","TB")))
  10. #尝试把进展组排除出去
  11. save(group_data,file = "group_data.Rdata")

例如 我们可以进行 TB(结核) 和LTBI(潜隐结核)实验对照分析。

基因表达数据预处理


读取数据集

  1. install.packages("openxlsx")
  2. library(openxlsx)
  3. # 读基因表达矩阵,第一列为基因名ID
  4. gse_info<- as.data.frame(read.xlsx("GSE107994_Raw.xlsx", sheet = 1))
  5. colnames(gse_info)

后续运行代码过程中,发现基因名称中有全数字的情况,这里做删除操作。

  1. library(dplyr)
  2. dim(gse_info)
  3. #基因里面有数字
  4. gse_info <- gse_info[!grepl("^\\d+$", gse_info$ID), ] #有效
  5. #基因名全为空
  6. gse_info = gse_info[gse_info$ID != "",] #无剔除
  7. dim(gse_info) #[1] 58023 176
  8. #负值处理
  9. gse_info[gse_info <= 0] <- 0.0001
  10. #重复值检查
  11. table(duplicated(gse_info$ID))

分组数据条件筛选,TB(结核) 和LTBI(潜隐结核)

  1. #+=====================================================
  2. #================================================
  3. #+========type分组数据条件筛选step3===========
  4. #+====================================
  5. #预处理之前,先筛选出TB组和LTBI组 的数据
  6. unique(group_data[,"group_more"]) #"TB" "LTBI_Progressor" "Control" "LTBI"
  7. #"TB" "LTBI" 对照,则剔除 "LTBI_Progressor" "Control"
  8. geo_accession_TB_LTBI <- group_data[group_data$group_more == "LTBI_Progressor" | group_data$group_more == "Control","geo_accession"]
  9. gse_TB_FTBI = gse_info[,!(names(gse_info) %in% geo_accession_TB_LTBI)]
  10. gse_TB_FTBI

低表达过滤(平均值小于1)

  1. #+=====================================================
  2. #================================================
  3. #+========删除 低表达(平均值小于1)基因 step4===========
  4. #+====================================
  5. #+==============================
  6. #新增一列计算平均
  7. gene_avg_expression <- rowMeans(gse_TB_FTBI[, -1]) # 计算每个基因的平均表达量,排除第一列(基因名)
  8. #仅去除在所有样本里表达量都为零的基因(平均值小于1
  9. gse_TB_FTBI_filtered_genes_1 <- gse_TB_FTBI[gene_avg_expression >= 1, ]

低表达过滤方案二(保留样本表达的排名前50%的基因)

  1. #+=================================================================
  2. #============================================================
  3. #+========删除 低表达(排名前50%)基因 step5===========
  4. #+==========================================
  5. #+================================
  6. #仅保留在一半以上样本里表达的基因
  7. # 计算基因表达矩阵每个基因的平均值
  8. gene_means <- rowMeans(gse_TB_FTBI_filtered_genes_1[,-1])
  9. # 计算基因平均值的排序百分位数
  10. gene_percentiles <- rank(gene_means) / length(gene_means)
  11. # 获取阈值
  12. threshold <- 0.25 # 删除后25%的阈值
  13. #threshold <- 0.5 # 删除后50%的阈值
  14. # 根据阈值筛选低表达基因
  15. gse_TB_FTBI_filtered_genes_2 <- gse_TB_FTBI_filtered_genes_1[gene_percentiles > threshold, ]
  16. # 打印筛选后的基因表达矩阵
  17. dim(gse_TB_FTBI_filtered_genes_2) #[1] 17049 176

删除重复基因,取平均

  1. #+=================================================================
  2. #============================================================
  3. #+========重复基因,取平均值 step6===========
  4. #+==========================================
  5. #+================================
  6. dim(filtered_genes_2)
  7. table(duplicated(filtered_genes_2$ID))
  8. #把重复的Symbol取平均值
  9. averaged_data <- aggregate(.~ID , filtered_genes_2, mean, na.action = na.pass) ##把重复的Symbol取平均值
  10. #把行名命名为SYMBOL
  11. row.names(averaged_data) <- averaged_data$ID
  12. dim(averaged_data)
  13. #去掉缺失值
  14. matrix_na = na.omit(averaged_data)
  15. #删除Symbol列(一般是第一列)
  16. matrix_final <- subset(matrix_na, select = -1)
  17. dim(matrix_final) #[1] 22687 175

离群值处理

  1. #+=================================================================
  2. #============================================================
  3. #+========离群值处理 step7==========================
  4. #+==========================================
  5. #+================================
  6. #数据离群处理
  7. #处理极端值
  8. #定义向量极端值处理函数
  9. #用于处理异常值,将超出一定范围的值替换为中位数,以减少异常值对后续分析的影响。
  10. dljdz=function(x) {
  11. DOWNB=quantile(x,0.25)-1.5*(quantile(x,0.75)-quantile(x,0.25))
  12. UPB=quantile(x,0.75)+1.5*(quantile(x,0.75)-quantile(x,0.25))
  13. x[which(x<DOWNB)]=quantile(x,0.5)
  14. x[which(x>UPB)]=quantile(x,0.5)
  15. return(x)
  16. }
  17. #第一列设置为行名
  18. matrix_leave=matrix_final_TB_LTBI
  19. boxplot(matrix_leave,outline=FALSE, notch=T, las=2) ##出箱线图
  20. dim(matrix_leave)
  21. #处理离群值
  22. matrix_leave_res=apply(matrix_leave,2,dljdz)
  23. boxplot(matrix_leave_res,outline=FALSE, notch=T, las=2) ##出箱线图
  24. dim(matrix_leave_res)

log2 处理

  1. #+=================================================================
  2. #============================================================
  3. #+========log2 处理 step8==========================
  4. #+==========================================
  5. #+================================
  6. # limma的函数归一化,矫正差异 ,表达矩阵自动log2
  7. #1.归一化不是绝对必要的,但是推荐进行归一化。
  8. #有重复的样本中,应该不具备生物学意义的外部因素会影响单个样品的表达,
  9. #例如中第一批制备的样品会总体上表达高于第二批制备的样品,假设所有样品表达值的范围和分布都应当相似,
  10. #需要进行归一化来确保整个实验中每个样本的表达分布都相似。
  11. #2.归一化要在log2标准化之前做
  12. library(limma)
  13. exprSet=normalizeBetweenArrays(matrix_leave_res)
  14. boxplot(exprSet,outline=FALSE, notch=T, las=2) ##出箱线图
  15. ## 这步把矩阵转换为数据框很重要
  16. class(exprSet) ##注释:此时数据的格式是矩阵(Matrix)
  17. exprSet <- as.data.frame(exprSet)
  18. #标准化 表达矩阵自动log2
  19. qx <- as.numeric(quantile(exprSet, c(0., 0.25, 0.5, 0.75, 0.99, 1.0), na.rm=T))
  20. LogC <- (qx[5] > 100) ||
  21. (qx[6]-qx[1] > 50 && qx[2] > 0) ||
  22. (qx[2] > 0 && qx[2] < 1 && qx[4] > 1 && qx[4] < 2)
  23. #负值全部置为空
  24. #exprSet[exprSet <= 0] <- 0.0001
  25. #去掉缺失值
  26. #exprSet = na.omit(exprSet) #15654
  27. #save (exprSet,file = "waitlog_data_TB_LTBI.Rdata")
  28. ## 开始判断
  29. if (LogC) {
  30. exprSet [which(exprSet <= 0)] <- NaN
  31. ## 取log2
  32. exprSet_clean <- log2(exprSet+1) #@@@@是否加一 加一的话不产生负值@#@¥@#@#@%@%¥@@@@@@
  33. print("log2 transform finished")
  34. }else{
  35. print("log2 transform not needed")
  36. }
  37. boxplot(exprSet_clean,outline=FALSE, notch=T, las=2) ##出箱线图
  38. dataset_TB_LTBI =exprSet_clean

绘图观察数据

  1. #+=================================================================
  2. #============================================================
  3. #+========对照组不同颜色画箱线图 step9==========================
  4. #+==========================================
  5. #+================================
  6. # 使用grepl函数判断字符串是否包含'LTBI',并进行颜色标记,为了画图
  7. group_data_TB_LTBI$group_color <- ifelse(grepl("LTBI", group_data_TB_LTBI$group_more), "yellow", "blue")
  8. #画箱线图查看数据分布
  9. group_list_color = group_data_TB_LTBI$group_color
  10. boxplot( data.frame(dataset_TB_LTBI),outline=FALSE,notch=T,col=group_list_color,las=2)
  11. dev.off()
  12. #+=================================================================
  13. #============================================================
  14. #+========绘制层次聚类图 step10==========================
  15. #+==========================================
  16. #+================================
  17. #+
  18. #检查表达矩阵的样本名称,和分租信息的样本名称顺序,是否一致对应
  19. colnames(dataset_TB_LTBI)
  20. group_data_TB_LTBI$geo_accession
  21. exprSet =dataset_TB_LTBI
  22. #修改GSM的名字,改为分组信息
  23. #colnames(exprSet)=paste(group_list,1:ncol(exprSet),sep = '')
  24. #定义nodePar
  25. nodePar=list(lab.cex=0.6,pch=c(NA,19),cex=0.7,col='blue')
  26. #聚类
  27. hc=hclust(dist(t(exprSet))) #t()的意思是转置
  28. #绘图
  29. plot(as.dendrogram(hc),nodePar = nodePar,horiz = TRUE)
  30. dev.off()
  31. #+=================================================================
  32. #============================================================
  33. #+========绘制PCA散点样本可视化图 step11===================
  34. #+==========================================
  35. #+================================
  36. ##PCA图
  37. #install.packages('ggfortify')
  38. library(ggfortify)
  39. df=as.data.frame(t(exprSet)) #转置后就变成了矩阵
  40. dim(df) #查看数据维度
  41. dim(exprSet)
  42. df$group=group_data_TB_LTBI$group_more #加入样本分组信息
  43. autoplot(prcomp(df[,1:ncol(df)-1]),data=df,colour='group') #PCA散点图
  44. dev.off()

至此,我们对两个数据集进行了预处理工作,下面我们可以对处理完毕的数据进行差异分析了

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